Fondement moléculaire et cellulaire des fonctions cérébrales
Le centre collabore avec des chercheurs provenant d’universités, d’hôpitaux et de l’industrie pour faire progresser la recherche sur le sommeil (troubles), l’hypoxie, les rythmes circadiens de la maladie et la neurogenèse. La grande variété d’instruments qui s’y trouvent, qui vont de la surveillance et de la dialyse à long terme chez les animaux (pour recueillir des échantillons d’animaux vivants en mouvement) à la caractérisation moléculaire, permet au chercheur d’observer un phénomène dans un milieu contrôlé et de sonder le paysage moléculaire au moyen de techniques analytiques. Il est possible d’utiliser de façon autonome la plupart des instruments après avoir suivi une formation. Cela permet aux étudiants d’avoir accès à un lieu analogue à leur laboratoire. Le personnel chevronné est toujours disponible pour offrir des conseils, des protocoles expérimentaux et du mentorat.
Microscopie confocale, découpage de tissus, bioanalyse – CLHP, électrophorèse capillaire, spectrométrie de masse, tests de comportement animal, élaboration de méthodes, protocole expérimental et assistance technique
- Soins de santé et services sociaux
- Sciences de la vie, produits pharmaceutiques et équipement médical
Laboratoires et équipements spécialisés
Laboratoire spécialisé | Équipement | Fonction |
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Imagerie et électrophysiologie | Système confocal à disque rotatif avec FRET (transfert d’énergie de fluorescence par résonance) et FRAP (redistribution de fluorescence après photoblanchiment) | Images tridimensionnelles à haute résolution de spécimens épais – celles-ci sont extraordinaires pour les applications de cellules vivantes dans le domaine de la diffusion moléculaire et pour le mouvement actif des composants cellulaires |
Système de déconvolution et d’imagerie de cellules vivantes sur microscope droit doté de deux caméras | ||
Système de déconvolution et d’imagerie de cellules vivantes sur microscope inversé doté d’une caméra | ||
Deux stéréomicroscopes avec éclairage à fibre optique | ||
Deux systèmes d’enregistrement de patch-clamp pour les tranches de cerveau sur microscopes automatisés – deux caméras | Électrophysiologie, micromanipulation, p. ex. pour mesurer le courant électrique qui passe à travers les canaux d’une membrane unique dans les cellules | |
Système d’imagerie du calcium pour la physiologie cellulaire sur microscope automatisé – deux caméras | Utilisé pour illustrer l’état du calcium d’une cellule, d’un tissu ou d’une substance | |
Histologie – Appareils Leica | Cryostat motorisé (CM3050 S) | Cryodécoupe, conversion rapide de tissus frais en tranches prêtes à observer au microscope; préparation d’échantillons pour la microdissection par capture laser |
Préparateur de tissus entièrement intégré (ASP300 S) | Procédures de routine et recherche en histopathologie avec une capacité de 300 cassettes et une contamination minimale des réactifs | |
Microtome automatisé (RM2255) | Coupe d’échantillons enrobés de paraffine ou de résine | |
Centre modulaire d’enrobage de tissu (EG1150) | Peut organiser le flux de travail d’enrobage dans n’importe quelle direction | |
Microtome à lame vibrante (VT1200 S) | Coupe entièrement automatisée de tissus frais et fixés | |
Appareil pour coloration de lames programmable et couvre-objet | ||
Microdialyse – systèmes bioanalytiques | Huit stations autonomes portatives | Échantillonnage de faible volume pour animaux vivants |
Blocs opératoires | Multiples stations de stéréotaxie et d’anesthésie numériques – portatives et stationnaires | |
Tests de comportement animal – Coulbourn Instruments | Sursaut acoustique – huit stations | |
Préférence de place – deux stations | ||
Labyrinthe en croix surélevé | ||
Labyrinthe radial à huit bras | ||
Système d’activité en enceinte expérimentale – quatre stations | ||
Système à navette d’évitement avec choc – huit stations | ||
Auto-administration – quatre stations | ||
Système ISS à six chambres – six stations | ||
Auto-stimulation – quatre stations | ||
Contrôles à long terme chez les animaux et systèmes d’enregistrement – Respironics Minimitter et Coulbourn | Contrôle animal pour 96 sujets | |
Température corporelle | ||
Fréquence cardiaque | ||
Activité de motricité globale | ||
Tours de roue | ||
Fréquence à laquelle l’animal boit ou lèche | ||
Comportement alimentaire | ||
480 canaux de contrôle des activités | ||
40 unités d’isolement en acier inoxydable | Contrôle du cycle d’éclairage | |
Colonie d’animaux axéniques | 864 cages pour souris | |
324 cages pour rat | ||
Appareil de STERIS pour laver les cages et les étagères | ||
Stérilisateur moyen de STERIS | ||
Six stations de changement des animaux | ||
Électrochimie – GMA et Quanteon | Deux stations complètes | Chronoampérométrie et ampérométrie |
Laboratoires d’essais sur les humains | Tests comportementaux, comprenant le logiciel E-Prime (v1.2, v2.0Pro) | |
Électroencéphalogramme (EEG) de haute densité (128 canaux) et potentiels évoqués cognitifs (PEC) – deux sur place et un mobile | ||
Oculomètre à distance Eyelink II de SR Research – deux sur place | ||
Simulateur de conduite de Virage | ||
Sondage en ligne (Opinio) | ||
Essais sur les humains dans un véhicule mobile | Tests comportementaux | |
EEG/PEC | ||
Oculomètre de SR Research | ||
Caractérisation moléculaire | Spectromètre de masse – Orbitrap Discovery de Thermo Scientific | Protéomique, métabolomique, élaboration de méthodes |
Accela LC | Chromatographie en phase liquide | |
Analyse de l’expression génétique – GeXP de Beckman Coulter | Expression génétique, séquençage de l’ADN, SNP, STR, pureté des oligonucléotides, AFLP | |
Fractionnement bidimensionnel – PF 2D de Beckman Coulter | Principalement pour des mélanges complexes de biomolécules, p. ex. protéines, composés glycosylés, lipides, etc. | |
Électrophorèse capillaire – PA800 de Beckman Coulter avec détection UV et FIL | Séparation de biomolécules au moyen de l’électrophorèse; il peut s’agir d’un collecteur de fractions autonome pour la spectrométrie de masse | |
CLHP de Beckman Coulter avec détection UV et électrochimique | Séparation chromatographique et analyse quantitative au moyen de la détection UV ou électrochimique | |
Lecteur de microplaques 800 de Beckman Coulter | Lecteur pour le dosage des protéines | |
Spectrophotomètre UV – Beckman | Programmes intégrés pour le dosage des protéines, cinétique, microcuvette disponible | |
Centrifugation comprenant un ultra- | ||
électroporateur/multiporateur | ||
Thermocycleurs | Amplifier les segments d’ADN par la réaction en chaîne de la polymérase | |
Logiciels – Proteome Discoverer, MaxQuant |